Tavşan Ağız Mukozasında Mast Hücrelerinin Dağılımı

Abstract

Tavşan ağız mukozasının değişik bölgelerindeki (dil, yanak, damak, dişeti) mast hücreleri ışık mikroskobu düzeyinde incelendi. Materyaller Kamoy, izotonik formol asetik asit (İFAA) ve formalin solüsyonlarında tesbit edildi. Hazırlanan blokların herbirinden dört seri kesit alındı. Birinci kesit Crossmann’ın üçlü boyama metodu ile, ikinci ve üçüncü kesitler toluidine blue ile (ikinci kesit bir dakika, üçüncü kesit yedi gün süreyle), dördüncü kesit astra blue/safranin ile ardışık olarak boyandı. Bu kesitlerdeki mast hücreleri oküler mikrometre yardımıyla sayılarak her bölgeye ait mast hücre yoğunluğu saptandı. Her bir fıksatif ve boya kombinasyonuna ait değerler birbirleriyle istatistiksel yönden karşılaştırıldı. Kullanılan fiksatiflerden formalin ile istenilen başarı sağlanamazken diğer iki fiksatifle tesbit edilen kesitlerde mast hücreleri gözlenebildi. Uzun süreli TB ve astra blue/safranin (ABS) ile boyanan kesitlerde mavi renkte boyanan mast hücreleri gözlendi. Uygulanan yöntemlerle elde edilen ortalama mast hücre sayıları birbirleriyle karşılaştırıldığında en iyi sonucun Kamoy solusyonu ile tesbit edilen kesitlerde elde edildiği saptandı. Bu yöntemle fiksasyondan sonra TB ile 7 gün boyamanın tavşan ağız mukozasındaki mast hücrelerinin incelenmesi için uygun bir yöntem olduğuna karar verildi. Kamoy solusyonu ile tesbit edilen kesitlerde ağız mukozasının değişik bölgeleri arasında içerdikleri ortalama mast hücre sayısı bakımından istatistiksel bir farklılık bulunamadı. İFAA solüsyonunda tesbit edilenlerde ise hem TB hem de ABS ile boyanan kesitlerde dişeti mukozasında diğer bölgelerden daha fazla mast hücresi bulunduğu saptandı.

Mast cells were identified by light microscopy in various oral mucosal sites (tongue, cheek, palate, gingiva) of the rabbits. Materials were fixed in Camoy, IFAA, formalin solutions and embedded in paraffin. Four consecutive sections were taken from each sample. The first section was stained by Crossmann’s triple staining method, the second and third with toluidine blue, for 1 minute and 7 days and tie last section was double stained in astra blue safranine. Mast cells in these sections were counted by using an ocular micrometer and for each field mast cell population is calculated. Statistical comparisons were made for each fixation and staining method combination. Mast cells were not identified in formalin fixed sections but were shown with toluidine blue after a seven day staining period and astra blue safranine. The average mast cell numbers were compared according to the fixation and staining methods. The sections fixed in Camoy solution and stained with toluidine blue for 7 days were demonstrated as the appropriate methods for identifying the rabbit oral mucosa mast cells. There was no statistical difference in the number of mast cells between the various sites of oral mucosa in Camoy fixed sections. However, in IFAA fixed sections there were more mast cells observed in gingiva than the other sites, either with toluidine blue stain or with astra blue/safranine stain.